네프론 여과 원리 실험과 단백뇨를 연관짓는 실험

Question

청색포도당과 베네딕트 용액을 사용해서 네프론 여과 원리 실험을 하려고 하는데, 사구체 질환이 생기면 원래는 여과되지 않아야하는 단백질이 여과되어 여과되어서 단백뇨가 나온다고 알고 있습니다. 이 과정을 실험 하려면 시린지 필터 공격을 다르게 해서 두번 실험을 해보면 될까요? 공경이 큰 필터로는 단백뇨가 나오는 것을 실험하는 것이고 공경이 작은 필터로는 정상적인 여과 과정을 실험하는 것 입니다. 추가로 실험에 적절한 공경도 알려주시면 감사할것같습니다 (0.2μm /0.45μm 이 두가지를 생각하고 있어요)

Answer 1

시린지 필터의 공경 크기를 달리하여 두 번 실험하는 방법은 단백뇨의 원리를 시뮬레이션하기에 적절한 접근 방식입니다. 공경이 작은 필터(0.2μm)는 정상적인 사구체 여과 과정을 모방하여 단백질이 통과하지 못하게 하고, 공경이 큰 필터(0.45μm)는 손상된 사구체를 모방하여 단백질이 여과되는 것을 보여줄 수 있습니다. 이 실험을 통해 정상 신장에서는 단백질이 여과되지 않지만, 사구체 손상 시 단백질이 여과되어 소변으로 배출되는 단백뇨의 원리를 이해할 수 있습니다.

Answer 2

말씀하신대로 시린지 필터의 공경을 다르게 하여 두 번 실험하는 방식은 사구체 질환에 의한 단백뇨 현상을 시뮬레이션하기에 꽤 좋은 방법으로 생각됩니다.

예상대로라면 네프론의 여과 장벽이 손상될 때 큰 분자인 단백질이 여과되는 과정을 충분히 재현할 수 있을 것으로 예상됩니다.

먼저 정상 여과의 경우, 즉 단백질 여과 안되는 경우는 0.2 μm 필터를 사용합니다. 이는 큰 분자인 단백질은 막고 작은 분자인 포도당만 통과시키는 건강한 사구체 장벽이라 할 수 있고, 여과액에서 포도당은 베네딕트 반응에 양성이나 단백질은 검출되지 않게 될 것입니다.

반면, 단백질이 여과되어 단백뇨 발생하는 경우의 재현에는 0.45 μm 필터를 사용합니다. 이는 사구체 질환으로 인해 손상되고 공경이 커진 장벽을 모방한 것으로 포도당과 함께 단백질까지 여과액으로 통과하게 하고, 여과액에서 단백질 검출 시 양성 반응을 보일 것입니다.

결과적으로 계획하신 0.2 μm와 0.45 μm는 여과 유무의 차이를 명확하게 보여주어 실험의 목적에 좋은 비교 공경입니다.

또한 실험 시 용액에 청색포도당과 달걀 흰자와 같은 단백질을 모두 섞어 사용해야 단백뇨 유무 확인이 가능하며, 단백질 검출을 위해 뷰렛 용액 등을 추가로 준비하는 것이 좋겠습니다.